Novoprotein 類器官

近岸類器官課堂-您護肝,我養肝

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Novoprotein  2022-06-06 20:19 發表於浙江

肝臟是人體中最大的器官之一,是調節營養吸收和代謝的主要器官,能夠中和攝取的有毒化合物,並產生體內近50%的循環蛋白質。肝臟由多種細胞類型組成,其中佔最高的是功能多樣的肝細胞。
肝臟作為重要的「解毒」器官,在執行日常功能時會受到各種代謝、病毒的侵害,可能會導致不同程度的肝損傷。長期損傷形成的纖維化疤痕破壞了肝臟的完整性,並且還會誘導門靜脈高血壓等其它疾病。在大多數肝臟疾病和藥物誘導的肝損傷(DILI)中,損傷始於肝細胞,同時也會活化其它類型細胞(如:KCHSC)。因此,為了充分理解每種肝病的表型和損傷器官的機制,我們需要建立複雜的體外肝模型,以便於更好地進行肝臟相關的疾病和毒性研究。
本篇文章基於Nature protocols 1Journal of hepatology 2發表的兩篇文章,整理了人類誘導多能幹細胞(human iPSCs)來源的肝臟類器官培養方案。

圖1. 人類iPSCs來源的肝類器官培養方案【2】
細胞來源
Human iPSCs
培養基配方

iPSCs培養與繼代
1.將100mm培養皿包覆5ml 0.1%(w/v)的明膠,室溫靜置15min至明膠凝固。
2.在明膠上接種絲裂黴素處理過的MEFs細胞懸浮液,細胞數約為1.8×10 6個。放置在37℃,5%CO 2的培養箱中培養至細胞匯合度70-80%時進行傳代。
3.吸去MEFs培養基,將iPSCs接種於明膠上,加入10ml iPSCs(I)培養基,放置於37℃,5%CO 2的培養箱中培養3-5天。

定向內胚層分化
4.在60mm培養皿中加入2ml Matrigel,室溫靜置2h並加入DMEM-F12培養基至完全淹過Matrigel。
5. 用不含Ca 2+ /Mg 2+的PBS沖洗iPSCs後,加入300μl Accutase,37℃孵育3-4min。
6. 將消化下來的細胞懸浮液收集並90g離心5min,收集細胞沉澱並加入iPSCs(II)培養基,同時進行細胞計數。
7. 將iPSCs接種在Matrigel平板上,接種密度為1.5×10 6個/60mm平皿,接種後加入4ml iPSCs(II)培養基,放置於37℃,5%CO 2的培養箱中過夜培養。
8. 接種後第二天,以DEs培養基進行換液,放置在37℃,5%CO 2的培養箱中培養6天,每2天換液一次。
肝內胚層分化
9. 以HEs培養基進行換液,放置於37℃,5%低氧的培養箱中培養3天。
10. 以HEs(II)培養基進行換液,放置在37℃,5%低氧的培養箱中培養4天,之後轉移至常氧條件下培養8天,達到肝臟成熟。
類器官培養
11. 肝成熟後的9-12天,在單層肝細胞上會出現三維結構,此時將漂浮的囊泡狀細胞收集起來,加入Matrigel並放置在37℃條件下10min使Matrigel凝固。
12. 添加HM培養基並完全沒過Matrigel頂部,每3天更換培養基,每7天機械繼代一次類器官。
類器官擴增和分化
13. 將HM培養基吸出,用PBS清洗後,加入EM培養基,放置於37℃,5%低氧的培養箱中培養4天進行類器官擴增。
14. 接著以DM培養基進行換液,放置在37℃,5%CO 2的培養箱中培養6天,完成進一步分化。

圖2. 擴增培養基(EM)和分化培養基(DM)孵育後的肝類器官免疫螢光圖【2】

肝類器官應用前景

類器官是一種能夠進行體外更新和自組裝的模型,相較於傳統的二維(2D)細胞培養,類器官的生長環境較貼合生理條件。3D培養的肝類器官可以用於疾病建模,以便確定疾病的機制以及治療方法。研究表明,3D培養的iPSC來源的肝類器官比2D幹細胞更易感染乙型肝炎病毒【3】。2019年Ouchi, R.et al. 【4】利用iPSCs來源的肝類器官,在體外模擬了發炎和纖維化,為進一步了解Wolman疾病打下了基礎。

在藥物毒性驗證方面,肝類器官同樣扮演重要的角色。對乙醯氨基酚是藥物引起肝衰竭最常見的來源,利用肝臟類器官可以實現藥物的肝毒性驗證,更適用於未來的藥物篩選和開發【5 】

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參考文獻
1TAKEBE, Takanori, et al. Generation of a vascularized and functional human liver from an iPSC-derived organ bud transplant. Nature protocols, 2014, 9.2: 396-409.
【2】MUN, Seon Ju, et al. Generation of expandable human pluripotent stem cell-derived hepatocyte-like liver organoids. Journal of hepatology, 2019, 71.5: 970-985.
3Nie, YZ et al.(2018). Recapitulation of hepatitis B virus–host interactions in liver organoids from human induced pluripotent stem cells. EBioMedicine, 35, 114-123.
【4】Ouchi, R. et al. (2019). Modeling steatohepatitis in humans with pluripotent stem cell-derived organoids. Cell metabolism, 30(2), 374-384.
【5】Sgodda, M. et al. (2017). A scalable approach for the generation of human pluripotent stem cell-derived hepatic organoids with sensitive hepatotoxicity features. Stem cells and development, sensitive hepatotoxicity features. Stem cells and development, 26(290).